ارزیابی ترکیبات فنلی و فلاونوئیدی و فعالیت آنتی اکسیدانی و ضد باکتریایی (.Hypericum perforatum L ) جمع آوری شده از دو رویشگاه در شمال کشور

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار گروه میکروبیولوژی، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی،، ایران

2 دانش آموخته کارشناسی ارشد علوم وصنایع غذایی، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران

3 باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران

چکیده

این تحقیق به منظور ارزیابی فیتوشیمیایی و فعالیت ضدباکتریایی عصاره اتانولی گیاه دارویی گل راعی جمع‌آوری شده از دو رویشگاه استان مازندران واقع در شمال کشور انجام شد. سرشاخه‌های گلدار این گیاه از رویشگاه‌ها فرح‌آباد ساری و پاشاکلا آمل طی ماه‌های تیر تا مهرماه 1394 جمع‌آوری و پس از استخراج عصاره اتانولی، محتوای کل فنلی و فلاونوئیدی عصاره اتانولی این گیاه با روش رنگ سنجی و به‌ترتیب با استفاده از معرف فولین سیوکالتو و کلرید آلومینیوم تعیین شد. برای سنجش پتانسیل فعالیت آنتی‌اکسیدانی از واکنش با رادیکال DPPH استفاده شد. ارزیابی فعالیت ضدباکتریایی با روش چاهک و کمترین غلظت مهارکنندگی و باکتری کشی عصاره گیاه مذکور با روش میکرودایلوشن تعیین شد. نتایج نشان داد که محتوای کل فنلی و فلاونوئیدی و ظرفیت آنتی‌اکسیدانی گیاه جمع‌آوری شده از رویشگاه فرح آباد ساری نسبت به پاشاکلا آمل بیشتر بود. کمترین غلظت مهار کنندگی عصاره گیاه گل راعی جمع‌آوری شده از رویشگاه فرح آباد ساری علیه استافیلوکوکوس اورئوس، باسیلوس سرئوس، شیگلا دیسانتری و اشریشیا کلی به‌ترتیب 12، 12، 190 و 390 میکروگرم بر میلی‌لیتر به‌دست آمد در حالی‌ که این مقادیر برای گیاه جمع‌آوری شده از رویشگاه آمل به‌ترتیب  24، 24، 780 و 1560 میکروگرم بر میلی‌لیتر بود. این نتایج در روش چاهک نیز تایید شد. با توجه به محتوای بالای ترکیبات فنلی و فلاونوئیدی در گیاه جمع‌آوری شده از منطقه فرح آباد، فعالیت ضدباکتریایی بیشتر این گیاه را می‌توان به وجود این ترکیبات نسبت داد.
 

کلیدواژه‌ها

موضوعات


  1. Androw, J.M. 2001. BSAC Standardized disc susceptibility testing method. Journal Antimicrobial Chemotherapy, 7 (5): 48 - 57.
  2. Bayramoglu, G., Bayramoglu, A., Engur, S., Senturk, H., Ozturk, N. and Colak, S. 2014. The hepatoprotective effects of Hypericum perforatum L. on hepatic ischemia/reperfusion injury in rats. Cytotechnology, 66(3): 443-448.
  3. Burt, S. 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potential application in foods-a review. International Journal of Food Microbiology, 94: 223-253.
  4. Cai, Y., Luo, Q., Sun, M. and Corke, H. 2004. Antioxidant activity and phenolic compounds of 112 traditional Chinese medicinal plants associated with anticancer .Life Sciences, 74(17) :2157-2184.
  5. Chang, C., Yang, M., Wen, H. and Chern, J. 2002. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. Journal Food Drug Analaysis, 10(3): 178-182.
  6. Cock, I.E. 2008. Antibacterial activity of selected Australian native plant extracts. The Internet Journal of Microbiology, 4(2): 1-8.
  7. Eloff, J.N. 1998. Which extraction should be used for the screening and isolation of antimicrobial components from plants. Journal Ethnopharamacol, 60(1): 1-8.
  8. Fabrican, D.S. and Farnsworth, N.R. 2001. The value of plants used in traditional medicine for drug discovery. Environ Health Perspect (EHP), 109(1): 69-75.
  9. Fenner, R., Betti, A.H., Mentz, L.A. and Rates, S.M.K. 2006. Plants Used in  Brazilian folk medicine With potential antifungal activity. . Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences 2(3): 369-394.
  10. Franklin, G., Conceica˜o, L.F.R., Kombrink, E. and Dias, A.C. 2009. Xanthone biosynthesis in Hypericum perforatum cells provides antioxidant and antimicrobial protection upon biotic stress. Phytochemistry, 70(1): 60–68.
  11. Glisic, S., Popadic, S. and Skala, D. 2006. St. John’s Wort (Hypericum perforatum L.) –supercritical extraction, antimicrobial and antidepressant activity of extract and their components. Chem. Industry, 60: 61-72.
  12. Khosravi, A. and Malecan, M. 2004. Effects of Lavandula stoechas extracts on staphylococcus aureus and other gram negative bacteria. The Journal of Qazvin University of Medical Sciences, 7(5): 3-9.
  13. Kritika, N. 2007. Antimicrobial effect of five Zingiberaceae Essential oils. Molecules, 12: 2047-2060.
  14. Mahboubi, M., Bokaee, S., Dehdashti, H. and Feizabadi, M.M. 2012. Antimicrobial activity of Mentha piperitae, Zhumeria majdae, Ziziphora tenuior oils on ESBLs producing isolates of Klebsiella pneumoniae, Biharean Biologist, 6(1): 5–9.
  15. Mashreghi, M. and Momtazi, F. 2012. Comparison of the antibacterial effects of various concentrations of J. Rafsanjan Univ. Med. Sci. 11(2):103-14.
  16. Kiaei E, Mazandarani M, Ghaemi A.The effect of ethanol extract of 7 species of  medicinal plants against bacteria isolated from patients with urinary tract infection in the city of Gorgan. J Med Plants. 2010; 9(2): 74-83.
  17. Mazandarani, M., Makari, S. and Bajian, G.R. 2011. Evaluation of phytochemical and antioxidant activity in different parts of Heracleum gorganicum Rech.F. in Golestan province, North of Iran. Iranian J. plant physiology, 2(2): 381-388.
  18. McDonald, S., Prenzler, P.D., Autolovich, M. and Robards, K. 2001. Phenolic content and antioxidant activity of olive extracts. Food Chemistry, 73:73-84.
  19. Moore, L.B., Goodwin, B., Jones, S.A., Wisely, G.B., Serabjit-Singh, C.J.,  Willson, T.M., Collins, J.L. and Kliewer, S.  2000. Induces hepatic drug metabolism through activation of the pregnane X receptor. Proc Natl Acad Sci., 97(13): 7500–7502.
  20. Mozdastan, S., Ebrahimzadeh, M.A. and Khalili, M. 2015. Comparing the impact of different extraction methods on antioxidant activities of myrtle (Myrtus communis L.). J. Mazandaran Univ Med Sci, 25(127): 10-24 (In Persian).
  21. Mukherjee, P.K., Verpoorte, R. and Suresh, B. 2000. Evaluation of in vivo wound healing activity of Hypericum patulum (Family: Hypericaceae) leaf extract on different wound model in rats. J Ethnopharmacol, 70(3): 315–321.
  22. Nostro, A., Germano, M.P., D’Aneglo, V., Marino, A. and Cannatelli, M.A. 2000. Extraction method and bioautography for evaluation of medicinal plant antimicrobial activity. Lett. Appl. Microbiol, 30(5): 379-384.
  23. Galilee Marandi, R. 2012. Post harvest physiology. Third edition. Urmia: Urmia University Jihad publication, 624.
  24. Radulovic, N., Stankov -Jovanovic, V., Stojanovic, G., Smelcerovic, A. Spiteller, M. and Asakawa, Y. 2007. Screening of in vitro antimicrobial and antioxidant activity of nine Hypericum species from the Balkans. Food Chemistry, 103(1): 15-21.
  25. Sun, T., Powers, J.R. and Tang, J. 2007. Evaluation of the antioxidant activity of asparagus, broccoli and their juices. Food Chemistry, 105(1): 101-106.
  26. Tortora, G.J., Funke, B.R. and Case, C.L. 2001. Microbiology: An Introduction, Benjamin Cummings, San Francisco. 12.
  27. Trovato, A., Raneri, E., Kouladis, M., Tzakou, O., Taviano, M.F. and Galati, E.M. 2001. Anti inflammatory and analgesic activity of Hypericum empetrifolium Willd. (Guttiferae). Farmaco, 56: 455-457.
  28. Wang, J., Kan, Q., Li, J., Zhang, X. and Qi, Y. 2011. Effect of neferine on liver ischemia–reperfusion injury in rats. Transplantation Proceeding, 43:2536–2539.
  29. Weckesser, S., Engel, E., Simon, B., Wittmer, A., Pelz, K. and Schmepp, C.M. 2007. Screening of plant extracts for antimicrobial activity against bacteria and yeast with dermatological relevance. Phytomedicine, 14(7-8): 508-16.
  30. WHO report, 2003. Global tuberculosis control: surveillance, planning, financing Geneva, Switzerland, (WHO/CDS/TB /2003.316).
  31. Zarghami Moghaddam, P., Zolfaghari, M.R., Ghaemi, E.A., Mazandarani, M., Mansourian, A.R. and Taheri, S.A., 2011. Negative performance of root extract of Onosma dichroanthum Boiss. on the burn wound healing in an animal model. Archives of Clinical Microbiology. Microbial, 2(5): 1-5.